АКТ О ВНЕДРЕНИИ

Диета без пудинга.
Организация предварительного анализа лабораторных исследований у пациентов с заболеваниями органов дыхания.
Вступление.
В настоящее время лабораторные методы исследования играют важную роль в диагностике и лечении туберкулеза и других респираторных заболеваний. При обследовании пациентов с заболеваниями легких большое значение имеют организационные аспекты лабораторной диагностики, обеспечение точности и безошибочности лабораторных анализов, использование стабильных и технически надежных аналитических методов, а также контроль качества исследований.
В медицинских учреждениях Гомельской области используется довольно широкий спектр методов обследования, и в дополнение к унифицированным рутинным методам используются также современные методы исследования с высокой специфичностью и информативностью.
Необходимо внедрить в медицинскую практику ГОМЕЛЬСКОЙ области очень специфические методы тестирования для диагностики респираторных заболеваний, такие как автоматизированные системы быстрого выявления микобактерий VASTES MGIT 960, газоанализаторы крови и молекулярно-генетические методы исследования на основе ПЦР. Стандартизация на всех этапах диагностического процесса.
Процент ошибок предварительного анализа в общем количестве лабораторных ошибок колеблется от 50% до 95%. Ошибки, возникающие на предыдущем этапе анализа лабораторных исследований, снижают ценность всего процесса дальнейших лабораторных исследований, приводят к значительной потере средств, а в глазах лечащего врача из-за низкой достоверности полученных результатов теряется доверие к экспериментальным методам. Из-за особенностей респираторных заболеваний, в основном с воздушно-капельным путем передачи, ошибки в диагностике не только ставят под угрозу здоровье пациентов, но и представляют опасность для эпидемиологической безопасности всего региона.
Для всех типов лабораторных исследований стадия предварительного анализа сочетает в себе ряд процессов, предшествующих фактическому лабораторному анализу.
Подготовка к обследованию; получение биоматериалов (кровь, моча и т.д.); Транспортировка биоматериалов в лабораторию; первичная обработка биоматериалов в лаборатории; распределение и хранение биоматериалов в лаборатории.
Основной задачей этих этапов процесса предварительного анализа является обеспечение стабильности (сохранности) компонентов биоматериала, взятого для исследования, и сведение к минимуму воздействия различных факторов, изменяющих его качество.
В то же время патологические материалы из других органов и систем используются для дополнительного обследования пациентов с патологией органов дыхания и полиорганными поражениями туберкулеза. В связи с этим преданалитический этап рассматривается не только для лабораторных исследований, которые используются только для диагностики патологии легочной системы, но и для широкого спектра биохимических, гематологических, общеклинических, микробиологических и вирусологических исследований.
Область применения.
Инструкция предназначена для использования в медицинских учреждениях на стационарном и амбулаторном этапах.
Перечень необходимого лабораторного оборудования, реактивов и расходных материалов.
Лабораторная посуда, расходные материалы.
Одноразовый шприц с иглой (2 мл, 5 мл, 10 мл, 20 мл) Одноразовая пластиковая или стеклянная вакуумная система с прокалывающей иглой или иглой-бабочкой. Основной корпус очков. Скализатор стерилен. Это пластиковый контейнер для сбора биологической жидкости в индивидуальной упаковке. Кровоостанавливающий жгут. Центрифуга из полистирола для пробирок с пробкой. Трубка Эппендорфа.
10. Стерильная пластиковая коническая пробирка с крышкой, 50 мл.
11. Пластиковый наконечник для дозатора пипеток.
12. Двухфазная среда для сбора крови.
13. Стерильные ватные тампоны.
14. Медицинские контейнеры.
15. Лабораторные сосуды КЛ-10, КЛ-16.
16. Бактериологическая петля.
17. Капилляры Панченкова.
18. Сифон для сбора воды для промывания бронхов через рабочий канал фиброзного бронхоскопа.
Лабораторное оборудование.
Его центрифугируют в лаборатории при 1000-3000 оборотах в минуту. Домашний холодильник с морозильной камерой (-20 °C) (2-8 °C). Аэрозольный ингалятор. Волоконная бронхоскопия. Одноканальные дозаторы для пипеток с постоянной и переменной емкостью (10 мкл, 50 мкл, 100 мкл, 200 мкл, 1 мл, 5-50 мкл, 50-200 мкл, 200-1000 мкл, 1-5 мл). Спиртовая лампа.
Реагент.
3. 8% раствор цитрата натрия.0,9% раствор хлорида натрия, 70% раствор этилового спирта.5% спиртовой раствор йода.10%-ный водный раствор трехзамещенного фосфата натрия.0 хлоргексидина бигулуконата. 05 ~ 0,1% раствор. 2-3% раствор борной кислоты. Раствор гепарина 5000 Ед/мл.
Возможные причины ошибок и способы их устранения.
Неправильная подготовка пациентов к лабораторным исследованиям, несоблюдение условий сбора, хранения, транспортировки биоматериалов и первичной обработки. Стандартизация на этапе предварительного анализа значительно снижает количество ошибок.
Противопоказания.
Противопоказания к фиброзной бронхоскопии могут ограничить потребление жидкости для промывания бронхов и BALF.
1. Преданалитический этап клинического лабораторного исследования.
1. 1. Подготовка пациента.
Наиболее распространенными материалами для лабораторных исследований являются кровь, моча и другие жидкости организма.
Сбор материалов для лабораторных исследований следует проводить до того, как испытуемый примет пищу (натощак). Последний прием пищи за 8-12 часов до приема биоматериала (12 часов в случае исследования липидного спектра). Исключением из этого правила является исследование, которое проводится в любое время в чрезвычайной ситуации с учетом этого фактора.
Время, затрачиваемое в любое время с 7 до 9 утра, для регулярных исследований и для экстренных диагностических случаев (неотложные состояния). Запрещено сдавать кровь накануне для регулярных биохимических анализов.
За 1-2 дня до обследования пациент должен придерживаться стандартной диеты, исключающей алкоголь из рациона.
Препарат оказывает значительное влияние на результаты лабораторных анализов различными способами. Он изменяет интенсивность патологических процессов, оказывает побочные эффекты на функционирование различных органов и систем, вызывает общетоксический эффект, вмешивается в анализируемый материал в ходе экспериментов. Тест. Поэтому при подготовке субъекта к клиническому обследованию необходимо придерживаться следующего подхода:
Препараты, которые мешают определению ингредиентов, исключаются перед приемом биоматериалов, если они не вводятся по состоянию здоровья. Утренний прием препарата осуществляется только после взятия биоматериалов. Забор крови в диагностических целях проводится перед вливанием лекарственных средств или растворов.
Биоматериалы используются перед диагностическими или терапевтическими процедурами, такими как хирургия, инфузия, переливание крови, раствора, пункция, инъекция, биопсия, общий массаж тела, эндоскопия, физическая активность, ЭКГ, рентгенологическое исследование и т.д.
Во время теста на толерантность к глюкозе (нагрузочный тест на глюкозу) не выполняйте никаких других операций, в том числе в диагностических целях.
По крайней мере за 3 дня до приема биоматериалов необходимо убедиться в отсутствии значительной нагрузки на тело и мышцы.
Чтобы устранить последствия изменений позы, испытуемые должны отдыхать, сидеть или лежать не менее 5 минут, поскольку концентрация многих компонентов меняется по мере того, как пациент переходит из горизонтального положения в вертикальное. . Это особенно важно при изучении показателей кислотно-щелочного баланса и активности ферментов. Предпочтительно, за исключением пациентов в критическом состоянии, пациентам необходимо брать кровь в положении сидя.
Во время динамического наблюдения за пациентом материал следует брать в том же положении на теле.
Психическое напряжение, стресс, вызванный выделением гормонов, сильно изменяет биохимические показатели. Поэтому при приеме жидкостей необходимо создавать спокойную и дружелюбную обстановку.
Исследование индивидуальных показателей требует подготовки особых пациентов: для определения уровня мочевой кислоты - диета без пуринов: за 3 дня до анализа исключаются мясо, рыба, красное вино, яйца, сыр, печень.
Определение уровня сывороточного железа - кровь исследуют через 10 дней после применения препаратов железа или прекращения приема препарата. Кровь для измерения сывороточного железа берется только в пластиковых пробирках.
Для определения скрытой крови в кале мясные продукты, рыбу, все виды зеленых овощей, помидоры и яйца следует исключить из рациона пациента за 3 дня до обследования. Не принимайте препараты железа.
1. 2. Технология получения биоматериалов для клинических лабораторных исследований.
Кровь.
Основным биоматериалом для большинства клинических тестов является кровь.
Естественная венозная кровь, взятая из полой вены (обычно локтевой вены) без применения антикоагулянтов. Венозная кровь с добавлением антикоагулянтов; Капиллярная кровь берется из пальца для измерения уровня глюкозы, общего анализа крови (CBC) и других компонентов. Определите показатель кислотно-щелочного баланса артериальной крови, взятый из аорты (обычно бедренной или подключичной артерии).
Дезоксигенированная кровь.
Наиболее предпочтительно использование венозной крови для биохимических исследований. Венозная кровь также является лучшим биологическим материалом для гематологических исследований, поскольку стандартизация процессов сбора, хранения и транспортировки крови позволяет свести к минимуму повреждение клеток и примеси других веществ. Стандартизация сбора капиллярной крови затруднена.
Венозная кровь берется медицинской сестрой с помощью стерильной иглы широкого калибра или одноразового стерильного шприца с пылесосом. Время зажима контейнера во время нанесения турникета (при необходимости) должно быть сведено к минимуму и составлять не более 1-2 минут. Пациентам не следует сжимать или разжимать пальцы. Это вызывает локальную гиперемию и гипоксию, в результате чего изменяется распределение биохимических показателей.
В зависимости от вещества, подлежащего сбору (сыворотка или плазма), кровь собирают в чистую сухую центрифужную пробирку без добавок (при сборе сыворотки) или с добавлением антикоагулянтов (при сборе плазмы).
Кровь для исследования кислотно-щелочного состояния (артерий или вен) следует брать без доступа воздуха. Для забора крови рекомендуется использовать профессиональный гепариновый шприц. Если в шприце есть пузырьки, накройте кончик шприца марлей, держите его вертикально и ударьте по шприцу. После удаления пузырьков закройте шприц крышкой и хорошо перемешайте, чтобы гепарин растворился.
Капилляры.
Капиллярная кровь чаще всего используется для измерения уровня глюкозы или общего сахара в крови.
Забор капиллярной крови производится ассистентом по обследованию. Для сбора крови используется стерильный одноразовый скальпель для сверления отверстий в коже, отдельных чистых и сухих специальных капилляров и индивидуальных предметных стекол.
Забор крови из капилляров.
Положение пациента - сидя или лежа.4-й палец левой руки пациента прокалывается с левой стороны от средней линии немного в стороне от ногтя, чтобы пустить кровь. Палец следует держать так, чтобы кровь скапливалась на конце пальца из-за силы тяжести крови.
Ассистент осмотра тщательно дезинфицирует поверхность кожи в месте прокола ватным тампоном, смоченным 70% спиртом. После того, как кожа высохнет (спирт испаряется с поверхности кожи в течение нескольких секунд), это необходимо для устранения гемолиза. Удалите первую каплю крови. Для исследования используются следующие капли крови. Кровь должна течь свободно. Массаж пальцами для стимуляции кровотока, сильное сжатие и выдавливание крови следует исключить. Это может привести к высвобождению фрагментов поврежденной ткани, клеток крови и тканевой жидкости, что может исказить результаты исследования.
Мазок крови делается из цельной крови сразу после взятия крови. Морфологический состав крови колеблется в течение дня, поэтому необходимо проводить повторные исследования в одно и то же время.
Сыворотка.
Сыворотка получается из цельной крови, которая естественным образом свернулась путем центрифугирования. Он не содержит факторов свертывания крови.
Плазма.
Плазма получается из крови путем отделения клеток крови. В отличие от сыворотки, он содержит факторы свертывания крови. То есть это бесклеточный супернатант, полученный центрифугированием крови, и его свертывание ингибируется добавлением антикоагулянтов.
Кровь для анализа на свертываемость - 3. Его собирают в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия. Соотношение цитрата натрия к крови строго 1 к 9. Лимонная кислота 1 мл и кровь 9 мл, или лимонная кислота 0,5 мл и кровь 4,5 мл. Уменьшение количества антикоагулянтов может вызвать свертывание крови и сделать невозможным исследование плазмы. При большом количестве антикоагулянтов все показатели могут быть длительными. Цитрат натрия в течение многих лет теряет свою активность, поэтому кровь собирают в пробирки с антикоагулянтами, полученными в лаборатории накануне исследования. Пробирка с цитратом натрия не должна подвергаться воздействию прямых солнечных лучей.
Когда игла вводится в кровеносный сосуд, тканевой тромбопластин попадает в пробирку с током крови. Поэтому первые 1,5- 2 мл крови не подходят для тестов на свертываемость, но могут быть использованы для биохимических исследований. Чтобы устранить влияние венозного застоя крови на свертываемость, необходимо ослабить жгут на несколько секунд во время взятия.
Венозную кровь, полученную с цитратом натрия (или другим антикоагулянтом), осторожно перемешивают до 5 раз сразу после сбора, переворачивая пробирку. Перемешивание следует производить без встряхивания или образования пены, что вызывает гемолиз красных кровяных телец. Время от начала наложения жгута до смешивания крови и антикоагулянтов не должно превышать 2 минут.
Коагулированные и гемолитические образцы тестированию не подлежат.
Если кровь берется через катетер из подключичной вены, проникновение гепарина в образец пациента, находящегося в отделении интенсивной терапии, в частности, приводит к ошибке в параметрах свертывания. В таких случаях кровь для исследования следует брать с помощью 2 шприцев. Катетер тщательно промывают физиологическим раствором в первом шприце, затем берут кровь для исследования в другой сухой шприц и наблюдают за соотношением крови к цитрату. Если раствор, переливаемый пациенту, содержит гепарин, то при необходимости кровь берется из другой периферической вены.
Моча.
Особенностью предварительной стадии анализа для количественного измерения компонентов мочи является то, что, как правило, это моча, собранная за определенный четко определенный промежуток времени.
При сборе мочи для анализа по Джимницкому первая часть мочи в 6 часов утра не учитывается, а затем в течение 24 часов (с интервалом в 3 часа) собирается 8 частей, и все отправляются в лабораторию одновременно. . Режим употребления питьевой воды в норме.
При общем анализе мочи вся моча утром берется после того, как наружные половые органы полностью выведены.
Моча для анализа мочи по Нечипоренко - только на следующий день. Возьмите более 50 мл мочи во время утреннего мочеиспускания.
Есть также 3 образца в другой день. Утром, после пробуждения натощак и тщательного мочеиспускания наружных половых органов, пациент начинает мочиться в первый сосуд, за ним следует 2-й сосуд и заканчивается в 3-м. Во 2-й части должен преобладать объем. Все блюда готовятся заранее, и у каждого есть номер порции.
При исследовании суточной мочи ее собирают в течение 24 часов обычным питьевым методом. В 6 утра пациент опорожняет мочевой пузырь, и моча в этой части выливается наружу. Затем в течение дня вся моча собирается в чистую емкость с широким горлом и закрытой крышкой вместимостью более 2 литров. Если не вся моча отправляется в лабораторию, количество суточной мочи измеряется с помощью женского цилиндра, часть переливается в чистую емкость и отправляется в лабораторию. Обязательно укажите количество суточной мочи.
Тест Реберга для оценки клиренса эндогенного креатинина. Перед исследованием голодные взрослые пациенты выпивают 450 мл разбавленного чая или воды и мочатся в туалете. Сразу после 60 минут (120 минут) вся моча собирается. В середине этого 1 или 2 часа, с промежутком в 2 часа, возьмите 3-5 мл крови из вены. Мочу и кровь относят в лабораторию.
Не все анализы мочи следует проводить во время менструации у женщин.
Калифорния
Для исследования в лабораторию доставляются отделенные фекалии, только что собранные в сухую и чистую стеклянную посуду. После приема клизм, препаратов, влияющих на опорожнение кишечника и изменяющих цвет кала, и ректальных свечей нельзя отправлять кал на исследование.
1. 3. Условия сбора материалов для клинического лабораторного исследования.
Сбор биологических материалов для лабораторных исследований должен осуществляться в соответствии с действующими нормативными документами Министерства здравоохранения Республики Беларусь, правилами стерильности и антисептики, а также санитарно-эпидемиологическим режимом.
Стандартизируя условия сбора биоматериала, можно уменьшить количество ошибок на этапе предварительного анализа. О крови можно резюмировать следующим образом:
Время приема - с 7 утра до 9 утра. Дозу принимают, когда субъект не ел в течение 8-12 часов, то есть натощак. Исключите значительную физическую активность и стресс за 3 дня до исследования. Исключите употребление алкоголя. Исключите лекарства, если они не вводятся по состоянию здоровья и могут повлиять на результат. За 5 минут до приема, когда испытуемый отдыхает (сидит или лежа). Время наложения жгута не превышает 1-2 минут. Пациент не должен сжимать или разжимать пальцы рук. Чтобы увеличить приток крови к ладони, не поглаживайте ладонь в месте взятия. Обратите внимание на конкретное место, где берется кровь, и соблюдайте метод забора крови.
Если необходимо сдать кровь для какого-либо клинического обследования, порядок, в котором эта кровь берется, следующий:
Кровь для микробиологического исследования. Натуральная кровь (большинство компонентов биохимических исследований) без антикоагулянтов и других добавок для получения сыворотки. Кровь с лимонной кислотой (для исследования свертываемости).
Основное правило заключается в том, что во избежание загрязнения антикоагулянтами кровь, взятая без антикоагулянтов, должна быть взята перед кровью, содержащей антикоагулянты.
Чтобы предотвратить гемолиз крови, следует учитывать следующее:
Пропорциональное сдавливание вен при наложении жгута время наложения жгута составляет не более 1-2 минут. Кровь берется из вены острой иглой с коротким срезом достаточно большого диаметра. Перенос крови из шприца в пробирку осуществляется сразу после сбора, избегая образования пены. В этом случае вам нужно извлечь иглу из шприца. Забор крови проводится в химически чистых, сухих пробирках (без примесей в моющих средствах, моющих средствах для стирки и воде). Исключено: сильное нагревание или переохлаждение, задержка транспортировки в лабораторию.
Забор крови следует проводить перед инфузионной терапией. Если это невозможно, захват осуществляется из вены другой руки. Если это невозможно, то из вены, где производится инфузия, но ниже места инъекции. Забор крови после инфузионной терапии следует проводить в течение 1 часа.
Когда кровь собирается через катетер, помещенный в кровеносный сосуд, канюлю промывают физиологическим раствором в объеме, соизмеримом с объемом катетера. При приеме не рекомендуется использовать первые 5 мл крови.
Количество взятой крови зависит от количества назначенных анализов и количества биоматериала, необходимого для них. При приеме сыворотки следует учитывать, что ее объем составляет примерно 1/3 от объема взятой крови. Рекомендуется взять в 2 раза больше количества крови, необходимого для анализа (минимум). Для биохимических анализов крови это 6 мл, для диаграммы свертывания - 4,5 мл.
1. 4. Регистрация направлений.
При получении материалов вам необходимо правильно заполнить направление. Не путайте пробирки с насадками, этикетками. На пробирке проставлен штамп отдела и серийный номер. В пробирке с кровью можно определить групповую и резус-принадлежность и даже фамилию пациента.
В инструкции по проведению анализа при сборе биоматериалов необходимо указать следующее:
Данные пациента (фамилия, имя, отчество, дата рождения, пол, адрес, номер истории болезни, диагноз); имя врача, отправившего биоматериал на анализ. Дата и время приема биоматериала; краткое описание переданного биоматериала (с указанием типа биоматериала), материалы, которые не соответствуют заявленному, исследоваться не будут. Например, слюна вместо мокроты, сыворотка вместо плазмы. Особенности сбора биоматериалов (место сбора - кровь, моча - объем, часть, время сбора); перечень необходимых исследований.
Инструкция по проведению анализа подписывается врачом.
Воплощение лабораторных исследований.
Экстренный осмотр (cito! Она проводится в течение 1-2 часов только для пациентов, находящихся в тяжелом состоянии, когда требуется срочное вмешательство (в зависимости от лабораторного оборудования и объема работ). Биологические материалы принимаются в экстренной аналитической лаборатории 24 часа в сутки.
Обычное обследование проводится в рабочий день в экстренной аналитической лаборатории для вновь поступивших пациентов или в тех случаях, когда состояние пациента ухудшается и не требует срочного вмешательства.
Примечание: Нормальное значение лабораторных показателей относится к материалу, собранному натощак. Поэтому интерпретация результатов срочных и дежурных исследований - это не простое сравнение с нормальными значениями.
Зарезервированные исследования - это все исследования, запланированные накануне, когда материалы поступают в лабораторию с 7 утра до 9 утра. Он может работать до 6 часов, а в некоторых случаях требует еще более длительных этапов анализа.
1. 5. Условия хранения и транспортировки материалов для клинических лабораторных исследований.
Для предотвращения профессиональных инфекций биологические жидкости считаются веществами, которые могут быть инфицированы, и должны соответствовать всем соответствующим правилам транспортировки, хранения и обращения во время обработки. Биоматериалы от инфицированных пациентов должны быть специально маркированы и обрабатываться с большой осторожностью. Все биоматериалы от ВИЧ-инфицированных пациентов должны быть помечены в направлении "код 120" с обязательным указанием номера истории болезни.
Полученная биологическая жидкость должна быть доставлена в лабораторию как можно скорее. Если необходимо определить показатели глюкозы и кислотно-щелочного статуса, кровь следует немедленно доставить в лабораторию.
На всех этапах транспортировки и обработки кровь следует хранить в пробирке с крышкой, чтобы предотвратить испарение и загрязнение микроорганизмами и различными веществами извне.
Тюбик для доставки должен располагаться вертикально с поднятой крышкой. Это повышает сохранность образца, ускоряет образование тромбов при получении сыворотки, снижает риск встряхивания и гемолиза во время транспортировки.
Тюбик не должен заполняться до краев. Цельная кровь, полученная без антикоагулянтов, не должна храниться в холодильнике перед доставкой в лабораторию, чтобы избежать гемолиза.
Центрифугирование проводят в течение 1 часа после сбора биоматериала.
1. 6. Оценка биоматериалов для исследований.
Гемолиз. Гемолитическая сыворотка и плазма не подходят для анализа многих компонентов (железа, ЛДГ, АЛТ, АСТ, калия, креатинина, билирубина и т.д.) по разным причинам (высокое содержание компонентов в эритроцитах и перенос веществ из них в сыворотку). / плазма при гемолизе).
Если есть признаки гемолиза, для анализа требуется свежая кровь. Ранее считалось, что причина гемолиза на стадии предварительного анализа.
Гиперлипидемия. При гиперлипидемии помутнение сыворотки или плазмы возникает после богатой жирами диеты или из-за нарушения липидного обмена, обусловленного высоким содержанием хиромикронов. Сыворотка и плазма при гиперлипидемии не подходят для исследования. В этом случае забор крови следует проводить после того, как пациент постится в течение 24 часов.
Мутность исследуемого материала может быть вызвана ростом бактерий, проникших в образец, особенно при длительной транспортировке или неправильном хранении. В этих случаях материал также не подходит для анализа.
В дополнение к вышесказанному, критериями непригодности биоматериалов для лабораторного анализа являются:
Отсутствие этикеток на пробирках, путаница в аналитических инструкциях. Несоответствие заявленных в направлении биоматериалов; несоответствие между количеством взятой крови и количеством добавленных антикоагулянтов; неправильное хранение биоматериалов; неправильная и преждевременная транспортировка биоматериалов.
1. 7. Первичная обработка биоматериалов в лаборатории.
Распределение и хранение биоматериалов в лаборатории.
Достань сыворотку.
Венозной крови, полученной без антикоагулянтов, в центрифужной пробирке дают постоять при комнатной температуре (15-25°C) в течение 30 минут до полного образования тромба. Когда сгусток крови закончит формироваться, откройте пробирку и осторожно проведите по окружности верхнего слоя крови вдоль внутренней стенки пробирки, используя тонкий металлический стержень или тонкую стеклянную пипетку, чтобы отделить столбик сгустка крови. Со стенки пробирки.
После удаления сгустка образец центрифугируют со скоростью 1500 об/мин в течение 10-15 минут для отделения сыворотки от сгустка (пипетка).
На всех этапах тюбик закрывается крышкой.
получите плазму.
После того, как пробирка наполнена кровью, венозную кровь, полученную с цитратом натрия, центрифугируют со скоростью 3000 об/мин в течение 15 минут. Плазма немедленно переливается в другую пробирку. Тюбик закрывается крышкой.
Для изучения функции тромбоцитов получают обогащенную тромбоцитами (тромбоцитарную) плазму. Кровь из антикоагулянта центрифугируют при 1000 об/мин в течение 5-7 минут. Плазму собирают и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10-15 минут для получения бескровной тромбоцитарной плазмы.
Плазму необходимо отделить от эритроцитов, а сыворотку - от сгустков крови в течение 1 часа после взятия крови. В противном случае из эритроцитов выделяется много веществ, что искажает результаты исследования. Сыворотка и плазма используются для лабораторных исследований сразу после приготовления. При необходимости сыворотку хранят в холодильнике при температуре 2-6°C. Если анализ задерживается, сыворотку или плазму хранят в течение 3 месяцев, замораживают сразу после получения и замораживают 1 раз непосредственно перед тестом.
Об особенностях подготовки биологических материалов для проведения определенных видов лабораторных исследований см. Приложение 1.
2. Преданалитический этап микробиологического исследования.
Общим требованием к сбору материала является обеспечение условий, исключающих контаминацию (загрязнение материала микроорганизмами) с прилегающих участков тела и окружающей среды. По возможности, перед началом антибактериальной терапии следует взять материал для бактериологического исследования. Материал собирают в стерильную посуду.
2. 1. Коллекция определенных видов материалов для микробиологических исследований.
Исследование крови.
При заболеваниях, характеризующихся лихорадкой, следует проводить посевные анализы крови.
Это исследование следует провести до начала антибактериальной терапии. Контролируемые испытания проводятся через 12-24 часа после отмены последнего препарата.
Кровь берется при повышении температуры из периферических вен в соответствии с правилами стерильности и мерами индивидуальной защиты, предусмотренными при обращении с кровью.
Не берите кровь из сосудистого катетера, если только вы не подозреваете инфекцию, вызванную катетером.
Забор крови проводится в процедурном кабинете или у постели пациента (для пациентов с серьезными состояниями).
Объем анализируемой крови для взрослых составляет 10 мл, для детей - 5 мл.
Сразу же высевают в питательную среду.
Инокуляция материалов (во флаконах, приготовленных в лаборатории)
Процедура проводится с участием лаборантов в бактериологической лаборатории для правильной прививки (вскрытие флакона, прижигание горлышка и т.д.).
Его проводили 2 человека. Пока один человек обрабатывает кожу пациента, сверля отверстия в венах для сбора крови, другой открывает крышку флакона на пламени спиртовой лампы, подставляет флакон со средой под поток крови из шприца или системы, обжигает горлышко и плотно закрывает флакон пробкой.
Соотношение крови к питательной среде должно составлять 1:10, по возможности, как можно больше (до 10 мл у взрослых и 5 мл у детей).
Инокуляция (использование коммерческих флаконов)
Посев проводится медсестрой отделения без участия сотрудников лаборатории, согласно прилагаемой инструкции. Резиновую пробку во флаконе дезинфицируют 70%-ным этиловым спиртом (или альтернативным дезинфицирующим средством) и выдерживают в течение 1 минуты. После замены инъекционной иглы во флакон вводится кровь.
Флакон маркируется фамилией, именем, отчеством пациента, датой и временем взятия пробы и хранится при термостате или комнатной температуре в защищенном от света месте (не в холодильнике) до доставки в лабораторию.
1 анализ крови не очень эффективен. Вы должны стремиться провести серию из 3 или более тестов в течение определенного периода времени.
Анализ мочи.
Материал для исследования берется до начала антибактериальной терапии или между процедурами. Предметом исследования является средняя порция свободно выделяющейся мочи, взятая в количестве не менее 3-5 мл в стерильном контейнере. Желательно взять утреннюю порцию мочи. Перед мочеиспусканием пациент должен хорошо вымыть руки и смыть наружные половые органы теплой водой с мылом. После мочеиспускания флакон следует закрыть так, чтобы не касаться внутренней поверхности крышки. Материал должен быть немедленно доставлен в лабораторию. Если это невозможно, нужно поставить бутылку с мочой в холодильник.
Ежедневный сбор мочи для бактериологического исследования не проводится.
Исследование веществ из верхних дыхательных путей (глотки, носоглотки, зева, гортани, носа)
Материал следует принимать внутрь за 2-3 часа до еды или после еды.
Прижимая язык лопаточкой, вставьте стерильный тампон между дугой миндалин и язычком и соберите материал вращательными движениями из области воспаления или язв задней поверхности глотки, миндалин и слизистых оболочек. В то же время необходимо избегать контакта с неизмененными слизистыми оболочками, мягким небом, языком и слюной.
Тампоны помещают в стерильные пробирки, при необходимости используя транспортную среду.
Для диагностики менингококковой инфекции слизь берут с задней стенки глотки через 3-4 часа после голодания или после еды, вводят за мягкое небо и пропускают через стерильный тампон 2-3 раза вдоль задней стенки глотки. Носоглотка. Ватные тампоны не должны касаться зубов, слизистой оболочки щек, язык.
Мазок со слизистой оболочки передней полости носа.
Вещество из полости носа берется сухим стерильным тампоном.
Микробные тампоны поочередно вводят в обе ноздри и материал отбирают со слизистой оболочки вращательными движениями. Тампоны помещают в стерильные пробирки.
Биологический материал будет доставлен в лабораторию как можно скорее, но после получения 1. Будет доставлен в течение 5-2 часов.
Анализ мокроты.
Для неспецифической микрофлоры обязательным условием проведения бактериологического исследования мокроты является сбор материала перед началом антибактериальной терапии. Сбор материалов для исследования определенной микрофлоры (туберкулез) следует проводить, по возможности, еще до начала химиотерапии. Это связано с тем, что даже определенные виды лечения в течение нескольких дней могут привести к гибели значительного количества микобактерий или снизить их выживаемость. Искажать результаты исследований.
Способ сбора мокроты.
Перед приемом пищи или лекарств соберите мокроту.
Перед взятием материала пациент должен почистить зубы, прополоскать рот кипятком и удалить остатки пищи, шелушащийся эпителий и микрофлору.
Пациент делает 2 глубоких вдоха, задерживает дыхание на несколько секунд после каждого вдоха и медленно выдыхает. Затем попросите пациента сделать 3-й вдох и с силой выдохните воздух. Затем снова вдохните, а затем откашляйтесь. Это способствует выработке мокроты из глубины легких. После появления продуктивного кашля пациент должен поднести емкость к губам и осторожно выдохнуть мокроту.
Качественными веществами можно считать мокроту, которая имеет характеристики слизи или слизисто-гнойной, а также содержит плотные беловатые включения. Желтоватая, серая или коричневая мокрота свидетельствует о диагностической ценности материала.
Минимально достаточное количество мокроты в исследуемой части составляет 3-5 мл.
Материалы для исследования должны быть доставлены в лабораторию сразу после сбора. Если транспортировка задерживается, собранный материал следует хранить в холодильнике, чтобы предотвратить рост зараженной микрофлоры.
Индуцированная мокрота. Если пациент не может собрать мокроту, ее собирают с помощью метода раздражающей ингаляции.
Используйте портативный или стационарный аэрозольный ингалятор для вдыхания аэрозоля. Для ингаляции рекомендуется использовать раствор, содержащий 1 г хлорида натрия (NaCl) и 150 г бикарбоната натрия (Na2co3) в литрах. Для приготовления раствора используется стерильная дистиллированная вода. Чтобы вызвать выделение мокроты, необходимо вдыхать 42-45 мл смеси, нагретой до 30-60°C, в течение 10-15 минут. В связи с тем, что при вдыхании аэрозолей выделяется водоподобный секрет, который постоянно напоминает слюну, во избежание отторжения материала бланк запроса и флакон с материалом должны иметь обязательную маркировку, указывающую на то, что материал был получен после вдыхания аэрозоля.
У большинства пациентов после ингаляции аэрозоля остаточная гиперсекреция бронхиального секрета наблюдается в течение нескольких часов, поэтому пациентам рекомендуется взять мокроту для 2-го исследования в течение 1 дня после ингаляции.
Если мокроты нет, ингаляция аэрозолем невозможна, или если эта процедура не удалась, берется раствор для очистки бронхов для исследования на микобактерии.
Промывание бронхов водой. Жидкость для промывания бронхов собирается врачом. Раствор для очистки бронхов собирают через сифон в стерильный флакон и немедленно отправляют в лабораторию.
Жидкость для бронхоальвеолярного лаважа (BALF). В качестве очищающего раствора используют стерильный изотонический раствор хлорида натрия, который нагревают до температуры 36-37°C. Жидкость вводят через короткий катетер, вставленный через биопсийный канал бронхоскопа, и немедленно отсасывают в сосуд, обработанный силиконом. Обычно повторяют 20-60 мл жидкости и вводят в общей сложности 100-300 мл. Количество полученного смыва составляет 70-80% от количества введенного физиологического раствора. Полученный БАЛЬФ немедленно отправляется в лабораторию.
Плевральный выпот. Кожу перед проколом обрабатывают 70%-ным спиртом, а затем спиртовой настойкой йода. После пункции жидкость собирают в стерильную пробирку с помощью шприца и немедленно отправляют в лабораторию.
Правила сбора диагностических материалов для исследования на автоматических системах обнаружения микобактерий.
Просторы МГИТ 960.
Материал для исследования микобактерий туберкулеза с помощью автоматизированной системы собирают утром после туалета полости рта, в специальный стерильный одноразовый флакон с завинчивающейся или закрытой крышкой. Оптимальный объем пробы составляет 5-7 мл. Собранный материал должен быть помещен в специальный контейнер и немедленно доставлен в лабораторию. При транспортировке материалов необходимо тщательно следить за целостностью флакона и точностью маркировки.
Материалы, содержащие кровь, не подходят для исследования.
Исследование асептически собранных материалов (спинномозговая жидкость, образец для биопсии, пункция, хирургический материал)
Люмбальная пункция и забор спинномозговой жидкости выполняются врачом в соответствии со всеми правилами асептики. Часть спинномозговой жидкости отбирают в отдельные пробирки для общего анализа жидкости (лабораторного), для биохимического исследования (биохимическая лаборатория) и для бактериологического исследования - из бактериологической лаборатории в стерильную пробирку. При микробиологических исследованиях отправляется наиболее мутное содержимое 2-й пробирки или 3 из 1 пробирки. Образцы должны быть немедленно доставлены в лабораторию. Во время транспортировки ликер следует предохранять от охлаждения. В отделении ликер может храниться несколько часов только при наличии термостата. Когда ликвор охлаждается ниже 30°C, жизнедеятельность менингококка теряется.
Другой асептически собранный материал помещают в стерильные флаконы, не содержащие консервантов, и немедленно транспортируют в лабораторию. Если материал не может быть доставлен в лабораторию немедленно, добавьте небольшое количество стерильного изотонического физиологического раствора для предотвращения высыхания и поместите его в холодильник при температуре 4-10 °C.
Исследование выделений из инфицированных ран.
Материал берется во время операции или во время перевязки.
При наличии абсцесса, раны, свища, гангрены или некроза тканей кожу вокруг раневой поверхности обрабатывают дезинфицирующим средством, некротические массы, обломки и гной удаляют стерильной сухой тканью, а выделения берут из корня. Повреждение при использовании стерильных контейнеров, шприцев или пробирок.
При отборе проб с помощью микробных мазков используются 2 мазка (1 используется для инокуляции, а другой 1 используется для бактериального тестирования). Кожу вокруг раны обрабатывают дезинфицирующими средствами, а некротические комочки, гной и остатки удаляют стерильными салфетками. Материал берется из глубины пораженного участка, с помощью стерильного тампона совершаются круговые вращательные движения от центра раны к периферии и помещается в стерильную пробирку (при необходимости используется транспортная среда).
Материал, собранный с помощью микробиологического тампона, хранится при комнатной температуре и доставляется на исследование в течение 2 часов. Материал, собранный в стерильный контейнер, должен быть доставлен в лабораторию в течение 2 часов.
Материал, полученный во время операции (образец для биопсии мягких тканей), помещают в стерильный контейнер, содержащий стерильный физиологический раствор.
При подозрении на анаэробную инфекцию (специфический неприятный запах раневых выделений, наличие пузырьков в тканях и раневых выделениях, окрашивание экссудата в черный цвет, некроз очага воспаления) транспортировка биоматериалов в лабораторию осуществляется в одноразовом шприце, наполненном воздухом, чтобы он не войдите. Часть мягкой ткани (мышцы) может быть взята из глубины раны. При подозрении на анаэробную флору материал доставляется в лабораторию, и материал немедленно прививается.
Исследование выделений женских половых органов.
Сбор материалов для микробиологического исследования осуществляет гинеколог или акушерка. Накануне исследования необходимо исключить половой акт, промывание влагалища и введение лекарственных форм. Материалы для бактериологического и микроскопического исследования отбираются одновременно. Из материала для микроскопии сразу же создается мазок на скользящем стекле. Мазок высушивают и отправляют в лабораторию.
Влагалище. После введения зеркала и подтяжки материал для исследования берется стерильным ватным тампоном с обратной стороны круглого века или с патологически измененного участка слизистой оболочки. Тампоны помещают в стерильные пробирки.
Культуральный материал должен быть взят перед ручным осмотром.
Шея. После того как шейка матки отразится в зеркале, часть влагалища обрабатывается ватным тампоном. После этого еще один тонкий ватный тампон осторожно вводят в канал шейки матки, чтобы не касаться стенок влагалища, и берут материал для исследования.
Исследование менструальной крови.
Исследование менструальной крови требует особого методического подхода. Из-за наличия в этом веществе большого количества протеолитических ферментов, фибринолитических ферментов и других ферментов требуется немедленная доставка материала в лабораторию и его полная обработка. С одной стороны, менструальная кровь является очень подходящим материалом для развития зараженной флоры, а с другой стороны, обилие ферментов отрицательно влияет на жизнеспособность микобактерий. Менструальную кровь следует собрать в стерильный контейнер и немедленно доставить в лабораторию. Он тестируется таким же образом, как кровь или любое другое вещество, смешанное с кровью.
Исследование выделений мужских половых органов.
Материал берется урологом.
Втирайте из мочеиспускательного канала. Материал берется специальным зондом, и на скользящем стекле сразу же образуется мазок. Необходимо отправить в лабораторию не менее 2 мазков от 1 пациента. Соскоблите зонд из ладьевидной ямки, вращая его по спирали в течение 10-12 секунд. Соскоб из мочеиспускательного канала следует делать не более чем через 1 час после мочеиспускания (в идеале не более чем через 4 часа). Если выделений мало, пациенту рекомендуется не мочиться в течение 4-8 часов, помассировать мочеиспускательный канал и попытаться выдавить секреты, скопившиеся глубоко.
Для бактериологического исследования материал отбирают в стерильные чашки с зондами, тампонами и бактериологическими петлями и немедленно транспортируют в лабораторию.
Чтобы эякулировать. Материалы для исследования обычно собираются с помощью мастурбации. Перед введением эякуляторной жидкости пациент должен воздержаться от половых сношений, питья и горячих источников в течение 3-4 дней. Длительное стояние изменяет физико-химические свойства образца, влияет на активность сперматозоидов и, соответственно, влияет на результаты анализа, поэтому лучше всего проводить исследование в течение 1 часа с момента поступления эякуляторной жидкости.
Секрет простаты. Чтобы получить секрет простаты, в течение 1 минуты массируйте правую долю железы, затем левую долю, по очереди, от периферии к центру. Беловато-желтую жидкость, выделяющуюся из мочеиспускательного канала, собирают на предметное стекло или в пробирку и транспортируют в лабораторию.
Съемный осмотр глаз.
Материал берется офтальмологом в течение 5-6 часов после местного введения лекарства и лечения. Возьмите материал из конъюнктивы стерильным ватным тампоном (богатым гнойными выделениями). Веки следует придерживать рукой. Материал берут, перемещая 2-3 раза вдоль слизистой оболочки нижней переходной складки. Если гноя или слизи нет, закапайте 1 каплю стерильной изотонической жидкости под нижнее веко.
Из слезного мешка выделения получают путем экструзии.
Материал из роговицы берется с помощью петли или другого инструмента после анестезии.
Осмотр уха.
Сбор материалов для микробиологического исследования осуществляет отоларинголог. При повреждении среднего и внутреннего уха исследуются точки и материалы, полученные во время хирургического вмешательства, собранные в стерильную посуду. Выделения из влагалища собираются стерильным ватным тампоном. Наиболее надежные результаты этого исследования получены путем сверления отверстия в среднем ухе через неповрежденную барабанную перепонку.
Если поражено наружное ухо, то кожу на прилегающих участках следует обработать растворами антисептиков, чтобы убедиться, что тампон не загрязнен сапрофитной микрофлорой при сборе материала. Тампон, содержащий материал, помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию.
Исследование кала.
Взятый из контейнера или кастрюли, тщательно вымытый и сразу после дефекации, без следов дезинфицирующего средства.
Образец отбирается стерильной стеклянной палочкой или проволочной петлей.
Если в кале есть патологические примеси (слизь, кровь, хлопья, гной), они должны быть включены в собранный образец.
Положите часть кала: в случае дисбактериоза - в стерильные флаконы (5-10 г от массы кала), в случае разложения и флоры - в пробирки с консервантами и тщательно перемешайте. Количество дефекации должно составлять 1/3 от количества антисептика.
Для устранения воздействия обеззараживающих растворов рекомендуется получать кал непосредственно из прямой кишки, смоченный стерильным физиологическим раствором, стерильными ректальными тампонами, ватой или хлопчатобумажной марлей, закрепленными на металлической петле или деревянной палочке. Этот материал получен медицинским персоналом. Пациента просят лечь, подтянув бедра к животу и отпустив ягодицы ладонями. Ватный тампон вводится на глубину не менее 5-6 см.
2. 2. Транспортировка биологического материала в лабораторию для бактериологического исследования.
Во время транспортировки диагностические материалы должны быть защищены от прямых солнечных лучей и высокой температуры. Если транспортировка занимает более 24 часов, следует использовать консерванты. Перечисленные ниже консерванты добавляются к собранному материалу (мокроте) в количестве 2 раз.
10% водный раствор трехзамещенного фосфата натрия - этот материал подходит для исследований.
Единственным требованием к упаковке инфекционных веществ для транспортировки является то, что они должны быть плотно упакованы, чтобы они не вытекли из контейнера при ударе, повышенном давлении и других обстоятельствах.
Чтобы избежать утечки жидкого материала и нарушения целостности флакона, его следует зафиксировать в вертикальном положении в транспортировочном контейнере или vix и снабдить прокладками, защищающими его от повреждений. Прокладки должны быть изготовлены из материалов с высокой абсорбирующей способностью, чтобы поглощать жидкость в случае утечки и удерживать загрязненные участки в транспортном контейнере.
Мазки для микроскопии разносят на специальные тарелки или чашки Петри. Чтобы предотвратить перекрестное загрязнение, они не должны соприкасаться друг с другом.
Важно: Все биоматериалы, собранные для бактериологического исследования на туберкулез (посевы), должны быть собраны в стерильные конические пробирки объемом 50 мл с завинчивающейся крышкой.
Важно: Из собранной части в виде биоматериалов (например, мокроты в количестве 5-10 мл) могут быть проведены все бактериологические исследования: неспецифическая микрофлора, бактериологическое наблюдение АФБ, люминесцентная микроскопия, ВАСТЫ, на твердых средах для посева грибов. Если материал предоставляется в виде мазка, для каждого вида исследования требуется отдельный мазок.
Бланк запроса на бактериологическое исследование отправляется в лабораторию вместе с каждым образцом, отправленным на анализ. Данные о пациенте должны быть полными. Все графы бланка заполняются с обязательным указанием вида исследования: бактериологическое исследование мокроты, посев и т.д.
Его следует поместить в пластиковый пакет, чтобы избежать заражения, загрязнения формы и индивидуальных обращений. Категорически запрещается заворачивать флакон с материалами для направления на исследование.
На всех этапах сбора, подготовки упаковочных вкладышей, хранения и транспортировки материалов сотрудники лаборатории должны направлять ответственное лицо, непосредственно ответственное за сбор диагностических материалов, контроль их качества, правильное хранение и транспортировку, а также своевременную доставку в лабораторию.
3. Преданалитический этап лабораторной диагностики высокопатогенного гриппа А и других вирусных инфекций.
Все пациенты с тяжелыми острыми респираторными инфекциями проходят тестирование на высокопатогенные вирусы гриппа. Забор образцов у пациентов с подозрением на высокопатогенную инфекцию вирусом гриппа А (ВПЧАВ) (умерших) проводится в медицинском учреждении после изоляции пациента. Основное исследование материала от пациента проводится методом ПЦР в режиме реального времени на базе лаборатории диагностики вирусных инфекций и особо опасных инфекций Гомельского областного центра гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья.
Сбор клинических материалов осуществляется обученным медицинским персоналом медицинского учреждения в средствах индивидуальной защиты органов дыхания (респиратор), защитных очках или лицевых щитках, бахилах, двойных резиновых перчатках в стерильных флаконах, пробирках, контейнерах и стерильных инструментах.
Для диагностики заболевания могут быть использованы следующие образцы:
Мазок из носа с мокротой Мазок из носоглотки вдыхает из носоглоточного мазка из полости носа содержимое эндотрахеальной трубки.
В соответствии с клиническими показаниями они могут быть добавлены：
Трахеальная аспирация, бронхоальвеолярный лаваж, биопсия легочной ткани ткань легкого или трахеи, взятая после смерти.
Оптимальное время сбора.
Перед началом этиотропной терапии мазки из полости носа, глотки - парная сыворотка в течение 5 дней (предпочтительно первые 3 дня) от начала заболевания, первая сыворотка в течение 3-5 дней от начала заболевания. Через 14 дней после 2-й сыворотки, материал для поперечного сечения - в день смерти о пациенте.
3. 1. Методы отбора проб клинических материалов.
Дезоксигенированная кровь.
Для серологического исследования берется пара сыворотки крови. Первый образец крови берется в первые 3-4 дня заболевания (или в первый день обращения за медицинской помощью). Для взрослых 3-5 мл крови берут из вены в чистую и сухую пробирку с помощью шприца.
Первичная обработка крови проводится в клинико-диагностической лаборатории. Венозной крови дают отстояться в течение 30 минут при комнатной температуре. Используйте стеклянную палочку, чтобы отделить ряд сгустков крови от стенки пробирки. Пробирку центрифугируют при 1500 об/мин в течение 10 минут. Полученную сыворотку отсасывают в автоматический дозатор с одноразовым наконечником. Для каждой сыворотки используется отдельный чип. Сыворотка не должна быть гемолитической, похожей на химию, с признаками роста бактерий.
1-й образец сыворотки хранят при температуре минус 2°C до получения 2-й сыворотки. Повторное размораживание - замораживание не допускается.
2-я проба берется через 14 дней после начала заболевания. Оба образца одновременно отправляются в лабораторию для анализа, для диагностики вирусов и особо опасных инфекций, в течение 2 часов после взятия второй сыворотки.24
Мазок из полости носа.
Мазки из полости носа для исследования методом РИФ, ПЦР берутся сухими стерильными тампонами. Перед взятием материала из полости носа необходимо удалить слизь, лейкоциты и отслоившиеся эпителиальные клетки.
Вставьте ватный тампон на глубину 2-3 см, слегка перемещая его вдоль внешней стенки носа, к нижней части ушной раковины. Затем слегка опустите тампон, вставьте его в полость носа под нижнюю носовую раковину, поверните и извлеките его вдоль наружной стенки носа. Возьмите ватный тампон из обоих носовых ходов. Смочите тампон в стерильной пробирке, содержащей 3 мл транспортной среды (физиологический раствор с фосфатным буфером или физраствор), загните конец палочки и плотно закройте ее пробкой.
Материал доставляется в лабораторию в течение 1-4 часов.
Следует взять мазки, содержащие клетки диагностической ценности - цилиндрический эпителий из глубины носа, где размножается вирус. Мазки, содержащие плоскоклеточные и переходные эпителиальные клетки из внешней части носа, не приносят пользы и не подлежат исследованию.
Мазок из ротоглотки.
Мазок берется с поверхности миндалин, небной дуги и задней стенки ротоглотки сухим стерильным тампоном вращательными движениями. Смочите тампон в стерильной пробирке, содержащей 3 мл транспортной среды (физиологический раствор с фосфатным буфером), загните конец палочки и заткните ее пробкой.
Материал поперечного сечения.
Кусочки легочной ткани собирают асептически. Объем образца составляет около 1-2 см? Это. Режущий материал помещают в стерильный контейнер и транспортируют в теплом контейнере в течение 24 часов.
3. 2. Место для хранения.
Все виды собранного биологического материала должны храниться в помещениях при температуре 2-8°C не более 1 суток.
Сыворотка заморожена.
3. 3. Транспортировка.
Каждый образец будет представлен с приложением. Ссылки на исследования материала HSVV методом ПЦР приведены в Приложении 1. Материалы, взятые после смерти, представляются с запросами по форме Приложения 2. Министерство здравоохранения Республики Беларусь на дату 2007/9/28 № 787).
Материал доставляется в лабораторию для диагностики вирусных и особо опасных инфекций в специальных термоконтейнерах с охлаждающими элементами. При необходимости для транспортировки веществ, содержащих вирусы, используются специальные носители.
Все образцы, подлежащие транспортировке, должны быть упакованы в тройную упаковку, содержащую 3 слоя упаковки. Упаковка должна быть сконструирована таким образом, чтобы выдерживать удары и напряжения, возникающие при транспортировке, чтобы содержимое не протекало. Между первичным контейнером и вторичной упаковкой должен быть достаточно мягкий абсорбирующий материал, чтобы впитать все содержимое первичного контейнера. При транспортировке нескольких клинических образцов каждый из них упаковывается в первичную упаковку, что исключает контакт между ними.
2002.7.4 Приказ Министерства здравоохранения Республики Беларусь № 106 "Об улучшении диспансерного наблюдения и выявления больных туберкулезом в Республике Беларусь" 4.22 Приказ Министерства здравоохранения СССР № 535 1985 "Об унификации микробиологических и бактериологических методов исследования, используемых в клинико-диагностических лабораториях медицинских учреждений" "1978.6.28 Приказ Министерства здравоохранения СССР № 558 "Об унификации микробиологических методов исследования туберкулеза "Постановление Министерства здравоохранения Республики Беларусь 2000-10-1 № 48 "О мерах по профилактике гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций "Инструкция по применению "Алгоритмическая бактериологическая диагностика туберкулеза и определение лекарственной чувствительности микобактерий к препаратам основной и резервной серий № 045-0506 Инструкция по эксплуатации "Лабораторная диагностика высокопатогенного гриппа у человека" 2009.5.8 № 049-05 Микроорганизмы 1-4 патогенной группы"2002.12.30 Дата № 11-7-13-2002 СП 1. 2. 011-94 "Безопасность обращения с микроорганизмами патогенных групп 1, 2"Инструкции и методические письма "Материалы в лабораторию по диагностике биологических вирусных, особо опасных инфекционных заболеваний Государственного учреждения "Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья"№ 8. 7. 2./40 Дата 29.05.2009
10. Услуги по тестированию в рамках Программы борьбы с туберкулезом. Часть 2. Бактериоскопия - ВОЗ, Женева, 1998 - страница 61.
11. Услуги по тестированию в рамках Программы борьбы с туберкулезом. Часть 3. Бактериологическая диагностика - ВОЗ, Женева, 1998. - 61 с.
12. Аналитические основы лабораторной диагностики: Методические рекомендации / Киселевский Ю., Колб В., Костин Н., Борец В., Лысяк-Шидловская В. - Гродно, 1996.- 73 с.
13. Бойцов А. Г., Иванов В. П., Ластовка О. Н., Порин А. А. Введение в клиническую микробиологию. - Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И. И. Мечникова, 1999. - 114 с.
14. Фридецкий Б. И, Кратохвила И., Горак И. и др. Предварительная стадия лабораторного анализа.- Пардубице, 1999. - 68 с.
15. Контроль качества лабораторных исследований: Практическое руководство / Е. Т. Зубовская и др. - Минск: БГУФК, 2009. - 119 с.
16. Методы обследования в клинике: Справочник / Меньшков В. В., Делекторская Л. Н., Золотницкая Р. П. и др.。и др.; Под ред. В. В. Меньшикова. - М.: Медицина, 1987. - 386 с.
17. Методы клинико-лабораторных исследований: Справочное руководство. Том 1. Гематологические исследования. Исследования коагуляции. Химическая микроскопия / В. В. Меньшков.- М.: Лаборатория, 2008. - 448 с.
18. Методы клинико-лабораторных исследований: Справочное руководство. Том 2. Клинические и биохимические исследования. Иммунологические исследования. В. В. Под редакцией: Меньшкова.– М.: Лаборатория, 2009. – 304 с.
19. Методы клинико-лабораторных исследований: Справочное руководство. Том 3. Клиническая микробиология. Бактериологическое исследование. Микологические исследования. Исследование паразитов. Иммунодиагностика инфекционных заболеваний. Молекулярные исследования в диагностике инфекционных заболеваний / Под ред. В. В. Меньшкова.– М.: Лаборатория, 2009. – 880 с.
20. Методы клинико-лабораторного исследования: Учебное пособие / ПОД ред. В. С. Камишникова. - М.: МЕДпресс-информ, 2009. - 752 с.
21. Камишников В. С.// Особенности подготовки биологических материалов для проведения отдельных видов лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 3.- С. 10-12.
22. Камишников В. С.// Особенности подготовки биологических материалов для проведения отдельных видов лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 4. - С. 10-11.
23. Камишников В. С.// Особенности подготовки биологических материалов для проведения отдельных видов лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 5. - С. 13-14.
24. Камишников В. С.// Особенности подготовки биологических материалов для проведения отдельных видов лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 6.-С. 5-7.
25. Ходюкова А. Б., Дальнова Т. С., Светлицкая С. Г.// Правила сбора биологического материала для общеклинических лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 8.- С. 11-12.
26. Ходюкова А. Б., Дальнова Т. С., Светлицкая С. Г.// Правила сбора биологического материала для общеклинических лабораторных исследований.// Медицинский мир.- 2010. - № 9.- С. 16-17.
Особенности подготовки биологических материалов для проведения определенных видов лабораторных исследований.
Название клинического обследования.
Требования к проведению определенных видов лабораторных исследований.
Аланинаминотрансфераза (АЛТ), аминотрансфераза аспарагиновой кислоты (АСТ)
При использовании сыворотки необходимо провести исследование в день забора крови, так как фермент теряет свою активность при хранении как при комнатной температуре, так и при ее низких значениях: 40°С и-20°С. Значениями параметров являются возраст, вес и потребление алкоголя. Физическая активность перед забором крови недопустима.
В исследовании используются сыворотка (плазма), спинномозговая жидкость и моча. Используйте свежую порцию сыворотки или, если исследование затягивается, ее следует хранить при температуре 4°C менее 72 часов. Образец стабилен при температур е-20°C в течение 6 месяцев. Рекомендуется использовать образцы без липемии и/или гемолиза. На значение параметра большое влияние оказывает положение тела при взятии крови.
Для выявления следовой альбуминурии в течение 24 часов берут мочу и 10 мл от общего количества берут на анализ. На значение параметра большое влияние оказывает физическая активность.
Спинномозговую жидкость следует центрифугировать и использовать свежей или хранить в течение 72 часов перед анализом. Образец стабилен при температур е-20°C в течение 9 месяцев. Образец не должен содержать примесей крови.
Активность фермента обычно измеряют в сыворотке крови, моче и плевральном выпоте. Образцы сыворотки стабильны при комнатной температуре до 7 дней и при 4°C до 4 месяцев. Предпочтительно хранить сыворотку при температуре 4°C. На значение параметра существенно влияет гиперлипидемия β.
Моча содержит в основном панкреатическую амилазу. Мочу следует хранить при температуре 4°C не более 1 часа.
На значение параметра большое влияние оказывают α-липопротеины и возраст. Характерна сезонность - титры зимой и весной больше, чем летом.
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученную плазму используют для анализа в течение 3 часов. Плазма стабильна при температур е-20°C в течение 2 недель.
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученную плазму используют для анализа в течение 3 часов. При охлаждении APTT деактивируется. На величину параметров влияют гепарин, гемолиз, поверхностно-активные вещества, активность факторов свертывания, антикоагулянты.
Исследованию подвергаются образцы сыворотки, свежие или хранящиеся при температуре 4°C менее 72 часов. Проанализированные образцы стабильны при температур е-20°C в течение 6 месяцев. Желательно использовать сыворотку без липемии и следовых количеств гемолиза. Во время забора крови следует избегать венозного застоя. На величину параметров большое влияние оказывают осанка, физическая активность и беременность.
Моча собирается в течение 24 часов без консервантов и хранится в холодильнике в течение всего периода сбора. Для проведения теста берется 20 мл мочи целиком. На измерения сильно влияет смесь спермы, гемоглобина, физической активности и беременности.
Спинномозговую жидкость или фильтрат следует центрифугировать перед использованием и анализировать свежие образцы или хранить при температуре 4°C менее 72 часов. Образец стабилен при температур е-20°C в течение 6 месяцев.
При использовании сыворотки необходимо анализировать свежие образцы или образцы, хранящиеся при температуре 4°C менее 72 часов. Образец стабилен при температур е-20 ℃ в течение 6 месяцев. Желательно использовать его при анализе образцов без следов гемолиза и признаков липемии.
Билирубин (общий билирубин, прямой билирубин, непрямой билирубин)
Образцы биологической жидкости должны быть защищены от света. Сильно ли влияет гемолиз на значение параметра? И свет?
Активность ферментов в образцах сыворотки остается неизменной при 4°C в течение 1 месяца и пр и-20°C в течение 1 года. Кровь берется после 8 часов голодания. На величину параметров сильно влияют холестаз, алкоголь, беременность, наркотики.
Газы крови (pH, pCO2, po2, бикарбонат и т.д.)
Кровь остается стабильной в пластиковом шприце более 15 минут при комнатной температуре. На величину параметров большое влияние оказывает избыток гепарина, место и техника забора крови, лейкоцитоз, тромбоцитоз, контакт с воздухом.
Кровь берется с антикоагулянтами. На значение параметров влияют срок годности образца, гипергликемия, гепарин, липемия, возраст, пол, венозный застой.
На значения параметров влияют срок годности образца, гепарин, липемия, парапротеин, лейкоцитоз, возраст, пол, венозный застой.
Кровь берется у пациента натощак. На значение параметра сильно влияют диета, потребление алкоголя, гематокрит, температура и место взятия крови.
Следует немедленно исследовать спинномозговую жидкость (чтобы избежать ложно низких результатов). На измерение сильно влияет бактериальное загрязнение. Хранить при температур е-20°C.
Возможность измерения в моче. В прилагаемой форме указано время сбора и общее количество мочи.
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученную плазму используют для анализа в течение 3 часов. Плазма стабильна при температур е-20°C в течение 1 месяца. На величину параметров влияет дефицит антикоагулянтов в пробе, ревматические факторы, тромбоз, цирроз печени, хирургические вмешательства, опухолевые заболевания.
Кровь забирается в пластиковую пробирку и собирается только утром, потому что она колеблется ежедневно. Не используйте гемолитические образцы крови. На значения параметров большое влияние оказывают биоритмы, пол, беременность, возраст, менструальный цикл.
Иг А, Иг Г, Иг М, Иг Е.
Рекомендуется использовать свежие образцы сыворотки или те, которые хранились при температуре 4°C менее 72 часов. Образец стабилен при температур е-20°C в течение 6 месяцев. Желательно использовать его при анализе образцов без следов гемолиза и признаков липемии. Значение параметра во многом зависит от возраста и курения.
Поскольку эритроциты содержат большое количество калия, в сыворотке или плазме не должно быть признаков гемолиза (так как это может привести к ложноположительным результатам).. По этой причине необходимо как можно скорее отделить сыворотку от клеток крови, избегая гемолиза. Предпочтительнее использовать плазму. Его также следует как можно скорее отделить от клеток крови. Забор следует выполнять без использования жгута или с коротким временем наложения.
Венозная кровь, используемая для сбора сыворотки, должна быть взята у пациента натощак, с минимальной закупоркой вен, без нагрузки на мышцы или не более чем через 1 минуту после восстановления кровообращения. Каково значение параметров, гиперлипидемия, беременность?снижение активности?, венозный застой во время забора крови? На это в значительной степени влияют следующие факторы:
Забор крови следует проводить в анаэробных условиях. Образцы крови немедленно доставляются в лабораторию на льду.
Предварительный забор крови, физическая активность, хирургическое вмешательство и внутримышечные инъекции недопустимы. Избегайте гемолиза. Отделение сформованных элементов должно быть произведено в течение первых 30 минут. После приема. Пациентам с пороками сердца рекомендуется исследование в динамике. Значение параметра - гемолиз, свет? Физическая активность? Влияние этих изменений является значительным.
Забор крови (вены или артерии) производится без использования жгута. Последнее может привести к увеличению содержания молочной кислоты. Транспортировка крови осуществляется при температуре 4°C (на льду или в теплом контейнере). Измерению препятствует гемолиз, гипербилирубинемия. На значение параметра большое влияние оказывает физическая активность, место взятия крови.
Избегайте гемолиза. Не замораживать. Пациентам с пороками сердца рекомендуется исследование в динамике. Измерение препятствует липемии, гемолизу. На величину параметров существенно влияют физическая активность, венозный застой во время забора крови, тромбоцитопения, беременность.
На значение параметра влияют период хранения образца, возраст, курение, физическая активность, циркадный ритм, инфекция, стресс и место взятия крови.
Фиксированные и окрашенные мазки крови стабильны. Состав препаратов лейкоцитов зависит от наличия хиломикрона, криоглобулина в крови, возраста пациента, физической активности, курения, суточного ритма, позы во время забора крови.
Измерение нарушается желтухой, гемолизом. На значение параметра в значительной степени влияют возраст, потребление алкоголя, диета, физическая активность, контрацептивы и лекарства.
Он также измеряется в суточной моче.
На значение параметра большое влияние оказывают возраст, белковая диета.
Кровь следует центрифугировать как можно скорее после взятия крови для получения сыворотки или плазмы. Избегайте гемолиза! Стабильность крови при комнатной температуре и 4°C составляет не более 1 часа. На величину параметров сильно влияет липемия, недостаток воды в организме и большие вливания.
Он анализируется только с помощью сыворотки. Плазма не подходит. Если исследование проводится в течение первых 48 часов после взятия крови, сыворотку хранят в холодильнике. Для более отдаленных исследований его следует заморозить при температур е-20 °C. На значения параметров большое влияние оказывают физическая активность, диета и поза во время тренировки. Забор крови, возраст?беременна? курит?
Протромбиновое время (PTI, INR - расчетный индекс)
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученную плазму используют для анализа в течение 3 часов. Плазма стабильна при 4°C в течение 1 дня. На величину параметров влияют гепарин, гемолиз, неправильный забор крови, патология печени, витамин К, непрямые антикоагулянты.
Простатспецифический антиген, ПСА (опухолевый маркер)
Биологическим материалом для исследования обычно является сыворотка. Чтобы получить его, вам нужно немедленно доставить венозную кровь в лабораторию. Образцы сыворотки стабильны при 4 ° C в течение 2 недель. Для длительного хранения его следует подвергнуть криоконсервации при температур е-20°C. Do не повторяйте цикл размораживания в холодильнике (!).). На значение параметров большое влияние оказывают цикличность, ректальное исследование, катетеризация, возраст, физическая активность и циркадный ритм.
Растворимый мономерный комплекс фибрина (SFMK)
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученную плазму используют для анализа в течение 3 часов. Плазма стабильна при 4°C в течение 1 дня и-20°C в течение 1 месяца. На значения параметров влияют неправильный забор крови, ингибиторы гепарина, эклампсия, алкогольный цирроз печени, опухоли, послеоперационные осложнения, заболевания сердца, почек, печени, фибринолиз. , эмболия легочной артерии, тромбоз глубоких вен, ревматический фактор.
Требуется быстрое отделение клеток крови. Плазму использовать нельзя.
При подсчете важно правильно оценить количество эритроцитов в поле зрения. На величину параметров влияют срок годности образца, освещенность, возраст, нарушение созревания эритроцитов, состояние эритропоэза.
Забор крови проводится натощак с периодом предварительного голодания 13-14 часов.1 Измерение уровня липидов в сыворотке крови не является показателем, поскольку индивидуальные различия велики. На значение параметра большое влияние оказывают возраст, пол, потребление алкоголя, диета и т.д.
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Полученная плазма стабильна при комнатной температуре в течение 7 дней или при 4°C в течение 23 дней. Плазма стабильна при температур е-20°C в течение 2 недель.
При подсчете важно правильно оценить количество эритроцитов в поле зрения. На значения параметров влияют агрегация тромбоцитов α, бактериальная α, длительное хранение образцов, микроэритроциты, менструальный цикл, физическая активность α.
Биологическим материалом для этого исследования являются сыворотка и кровь. Анализируемые аналиты стабильны в образце при 4°C в течение 24 часов или пр и-20°C в течение 3 месяцев.
3. Кровь берется в пробирку, содержащую 8% цитрата натрия (соотношение лимонной кислоты к крови 9 к 1). Плазма стабильна в течение нескольких месяцев при температур е-20°С. На величину параметров влияют гепарин, гемолиз, неправильный забор крови, диабет, воспаление, активация фибринолиза, сердечно-сосудистые заболевания.
Для исследования чаще всего используются сыворотка (плазма) (не должно быть следов гемолиза), моча, спинномозговая жидкость. При введении сыворотки или плазмы следует избегать гемолиза.
Для исследования используется сыворотка или плазма. Если измеряется только уровень холестерина, голодание более 12 часов не требуется. Сыворотка должна быть отделена от клеток в течение 2 часов. Образцы сыворотки стабильны при 4°C в течение 5-7 дней и пр и-20°C в течение 3 месяцев. Избегайте повторного замораживания или оттаивания (!)). Одно определение не является показателем.
Забор крови проводится строго натощак. После еды концентрация кишечных изоферментов увеличивается. Анализ следует проводить в день взятия крови. Через 4 часа концентрация снижается.
Количество клеток зависит от срока годности образца, агрегации тромбоцитов, наличия холодного агглютинина в образце, возраста и пола.
Лабораторное исследование биологических образцов, взятых у пациентов с ОРЗ.
Год рождения, возраст.
Адрес и телефон.
Дата появления симптомов.
Дата взятия образца.
Симптомы заболевания.